BMP4(bone morphogenetic protein 4)は、ヒトではBMP4遺伝子によってコードされているタンパク質である[4][5]BMP4遺伝子は、14番染色体英語版14q22-q23領域に位置している。

BMP4
識別子
記号BMP4, BMP2B, BMP2B1, MCOPS6, OFC11, ZYME, bone morphogenetic protein 4
外部IDOMIM: 112262 MGI: 88180 HomoloGene: 7247 GeneCards: BMP4
遺伝子の位置 (マウス)
14番染色体 (マウス)
染色体14番染色体 (マウス)[1]
14番染色体 (マウス)
BMP4遺伝子の位置
BMP4遺伝子の位置
バンドデータ無し開始点46,620,977 bp[1]
終点46,628,126 bp[1]
RNA発現パターン
さらなる参照発現データ
遺伝子オントロジー
分子機能 heparin binding
cytokine activity
co-receptor binding
transforming growth factor beta receptor binding
growth factor activity
BMP receptor binding
血漿タンパク結合
chemoattractant activity
細胞の構成要素 細胞外領域
細胞外空間
endoplasmic reticulum lumen
生物学的プロセス embryonic skeletal system morphogenesis
negative regulation of T cell differentiation in thymus
germ cell development
骨格系発生
mesenchymal cell differentiation involved in renal system development
cardiac septum development
ureteric bud development
positive regulation of protein phosphorylation
renal system process
positive regulation of endothelial cell differentiation
negative regulation of immature T cell proliferation in thymus
bud elongation involved in lung branching
tendon cell differentiation
anatomical structure formation involved in morphogenesis
ureter epithelial cell differentiation
negative regulation of cell cycle
mesenchymal to epithelial transition involved in metanephros morphogenesis
気管発生
post-embryonic development
monocyte differentiation
specification of ureteric bud anterior/posterior symmetry by BMP signaling pathway
blood vessel endothelial cell proliferation involved in sprouting angiogenesis
BMP signaling pathway involved in renal system segmentation
cranial suture morphogenesis
mesonephros development
odontogenesis of dentin-containing tooth
telencephalon regionalization
negative regulation of chondrocyte differentiation
血管発生
negative regulation of mitotic nuclear division
血管新生
prostate gland morphogenesis
positive regulation of ERK1 and ERK2 cascade
smooth muscle tissue development
BMP signaling pathway involved in heart induction
negative regulation of epithelial cell proliferation
組織の発生
metanephric collecting duct development
inner ear receptor cell differentiation
mesodermal cell fate determination
metanephros development
type B pancreatic cell development
regulation of pathway-restricted SMAD protein phosphorylation
negative regulation of cell population proliferation
steroid hormone mediated signaling pathway
mammary gland formation
positive regulation of collagen biosynthetic process
泌尿器系発生
negative regulation of myoblast differentiation
cell fate commitment
common-partner SMAD protein phosphorylation
glomerular visceral epithelial cell development
SMAD protein signal transduction
骨形成
腎臓発生
肺発生
ureter smooth muscle cell differentiation
embryonic digit morphogenesis
epithelial-mesenchymal cell signaling
negative regulation of thymocyte apoptotic process
mesenchymal cell differentiation involved in kidney development
negative regulation of cell death
regulation of odontogenesis of dentin-containing tooth
BMP signaling pathway involved in ureter morphogenesis
mesenchymal cell proliferation involved in ureteric bud development
smooth muscle cell differentiation
lymphoid progenitor cell differentiation
上皮の発生
positive regulation of transcription, DNA-templated
deltoid tuberosity development
negative regulation of prostatic bud formation
心臓発生
終脳発生
branching involved in ureteric bud morphogenesis
positive regulation of kidney development
軟骨形成
embryonic limb morphogenesis
negative regulation of MAP kinase activity
positive regulation of cartilage development
lens induction in camera-type eye
positive regulation of neuron differentiation
branching involved in prostate gland morphogenesis
regulation of protein import into nucleus
positive regulation of cell differentiation
erythrocyte differentiation
ヘッジホッグシグナル伝達経路
camera-type eye development
secondary heart field specification
negative regulation of phosphorylation
regulation of smooth muscle cell differentiation
regulation of cell fate commitment
regulation of branching involved in prostate gland morphogenesis
細胞分化
positive regulation of branching involved in lung morphogenesis
chondrocyte differentiation
regulation of cartilage development
organ induction
positive regulation of epithelial cell proliferation
epithelial cell proliferation involved in lung morphogenesis
negative regulation of cell proliferation involved in heart morphogenesis
negative regulation of apoptotic process
positive regulation of ossification
軟骨内骨化
regulation of smooth muscle cell proliferation
regulation of morphogenesis of a branching structure
BMP signaling pathway
macrophage differentiation
negative regulation of metanephric comma-shaped body morphogenesis
embryonic skeletal system development
mesenchymal cell proliferation involved in ureter development
osteoblast differentiation
hematopoietic progenitor cell differentiation
positive regulation of BMP signaling pathway
遺伝子発現調節
embryonic cranial skeleton morphogenesis
dorsal/ventral neural tube patterning
肺胞発生
positive regulation of protein binding
anterior/posterior axis specification
negative regulation of transcription, DNA-templated
positive regulation of epidermal cell differentiation
branching morphogenesis of an epithelial tube
trachea formation
specification of animal organ position
negative regulation of glomerular mesangial cell proliferation
positive regulation of smooth muscle cell proliferation
intermediate mesodermal cell differentiation
pulmonary artery endothelial tube morphogenesis
下垂体発生
positive regulation of cell death
lung morphogenesis
positive regulation of endothelial cell proliferation
bud dilation involved in lung branching
positive regulation of cardiac muscle fiber development
negative regulation of striated muscle tissue development
positive regulation of cell migration
negative regulation of branch elongation involved in ureteric bud branching by BMP signaling pathway
BMP signaling pathway involved in nephric duct formation
positive regulation of pathway-restricted SMAD protein phosphorylation
negative regulation of mesenchymal cell proliferation involved in ureter development
mesoderm formation
cellular response to growth factor stimulus
glomerular capillary formation
気管支発生
positive regulation of endothelial cell migration
多細胞個体の発生
negative regulation of metanephric S-shaped body morphogenesis
neural tube closure
脈管構造発生
embryonic morphogenesis
protein localization to nucleus
positive regulation of apoptotic process
embryonic skeletal joint morphogenesis
regulation of cell differentiation
negative regulation of branching involved in ureteric bud morphogenesis
mesodermal cell differentiation
neuron fate commitment
前脳発生
cloacal septation
骨発生
camera-type eye morphogenesis
positive regulation of SMAD protein signal transduction
negative regulation of glomerulus development
embryonic hindlimb morphogenesis
positive chemotaxis
outflow tract morphogenesis
odontogenesis
negative regulation of transcription by RNA polymerase II
epithelial to mesenchymal transition involved in endocardial cushion formation
cardiac jelly development
cellular response to BMP stimulus
positive regulation of osteoblast differentiation
epithelial tube branching involved in lung morphogenesis
cardiac muscle cell differentiation
apoptotic process involved in endocardial cushion morphogenesis
muscular septum morphogenesis
positive regulation of transcription by RNA polymerase II
positive regulation of bone mineralization
cardiac right ventricle morphogenesis
outflow tract septum morphogenesis
membranous septum morphogenesis
aortic valve morphogenesis
pulmonary valve morphogenesis
endocardial cushion development
内胚葉の発生
coronary vasculature development
BMP signaling pathway involved in heart development
pharyngeal arch artery morphogenesis
positive regulation of cell proliferation involved in outflow tract morphogenesis
negative regulation of extrinsic apoptotic signaling pathway
regulation of pri-miRNA transcription by RNA polymerase II
positive regulation of production of miRNAs involved in gene silencing by miRNA
翻訳後修飾
positive regulation of gene expression
positive regulation of epithelial to mesenchymal transition
positive regulation of cardiac neural crest cell migration involved in outflow tract morphogenesis
regulation of signaling receptor activity
positive regulation of cell population proliferation
遺伝子発現の負の調節
negative regulation of pri-miRNA transcription by RNA polymerase II
regulation of apoptotic process
regulation of MAPK cascade
細胞発生
成長
出典:Amigo / QuickGO
オルソログ
ヒトマウス
Entrez
Ensembl
UniProt
RefSeq
(mRNA)

NM_001202
NM_130850
NM_130851

NM_007554
NM_001316360

RefSeq
(タンパク質)
NP_001193
NP_570911
NP_001334841
NP_001334842
NP_001334843

NP_001334844
NP_001334845
NP_001334846
NP_570912

NP_001303289
NP_031580

場所
(UCSC)
n/aChr : 46.62 – 46.63 Mb
PubMed検索[2][3]
ウィキデータ
閲覧/編集 ヒト閲覧/編集 マウス

BMP4は、TGF-βスーパーファミリーの中のBMPファミリーの一員である。このスーパーファミリーには、成長や分化に関わる多数のファミリーが含まれている。BMP4は進化的に高度に保存されており、初期胚発生時の腹側帯域(ventral marginal zone、VMZ)や、その後の段階では耳胞英語版心臓に発現している[6]

構造

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ヒトのBMP4はまずプレプロタンパク質として合成され、翻訳後に切断されてC末端の116残基からなる活性型ペプチドが形成される。BMP4には7か所の保存されたグリコシル化残基が存在する[7]。単量体構造は3対のシステイン残基の間で形成されるジスルフィド結合によって維持されており、そのコンフォメーションはシスチンノットと呼ばれる。BMP4はホモ二量体、もしくは他の類似したBMP(BMP7英語版など)とヘテロ二量体を形成する場合がある。このホモ二量体またはヘテロ二量体形成によって、BMP4単体よりも強力な骨誘導能がもたらされる[8]

機能

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BMP4はTGF-βスーパーファミリーに属するタンパク質であり、他のBMPと同様、歯や四肢の形成、骨折の修復など、軟骨の発生に重要である。BMP4は、ヒトでは特に軟骨内骨化英語版の開始に重要であり、また筋発生、骨石灰化、尿管芽英語版の形成にも関与している[9]。BMP4は外胚葉組織の分化を刺激する[10]

胚発生

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軸形成と中胚葉のパターン形成

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胚発生時には、BMP4は背腹軸の決定や中胚葉のパターン形成に必要不可欠である。ツメガエルでは、BMP4は腹側中胚葉を誘導し、また表皮分化を促進することで神経への運命決定を抑制する[11]。マウスでは、BMP4の喪失によって中胚葉形成が損なわれる[12]

神経発生

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BMP4は神経管のパターン形成において背側化の役割を果たし、蓋板由来のBMP7英語版と共に作用して背側介在ニューロンを決定するとともに、底板からのShhシグナルに対抗する[13]。また、菱脳領域における神経堤細胞のアポトーシスにも寄与する[14]

体節と軟骨

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BMP4は体節パターン形成に関与しており、壁側中胚葉においてMSX1英語版MSX2英語版遺伝子の発現を誘導することで軟骨発生を促進する[15][16]

器官発生

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BMP4は複数の器官の発生に重要な役割を果たしている。肢芽英語版においては、BMP4はinterdigital mesenchymeと呼ばれる指間の水かき領域のアポトーシスを誘導し、指の分離に寄与する[17]。腎臓においては、BMP4は尿管芽の分岐と尿管分化を促進する[18]

幹細胞の分化

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BMP4はFGF2と相乗的に作用して多能性幹細胞の中胚葉系統への分化を促進し、骨形成や軟骨形成を高める[19]。また、BMP4とFGF2は甲状腺前駆細胞への分化も指揮する[20]

成体

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神経系

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成体の脳では、BMP4は歯状回英語版脳室下帯英語版において進行中の神経新生を調節している。歯状回においてBMP4は、BMPR-IA英語版を介したシグナル伝達によって神経幹細胞を静止状態に維持している[21]。脳室下帯においては、BMP4はSMAD4シグナルを介してオリゴデンドログリア系統よりも神経系統への運命決定を促進し[22]、またTis21/BTG2英語版と協働して神経への終末分化を促進する[23]

代謝と脂肪組織

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BMP4はアディポジェネシス英語版を調節することで、代謝に関与している。BMP4は白色脂肪細胞英語版の分化を促進する。また褐色脂肪組織においてはUCP1英語版の発現を誘導し、非ふるえ熱産生英語版を補助する[24]

生殖器系

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卵巣では、BMP4はBMP7とともに卵胞形成の初期段階を補助し、原始卵胞の生存を促進する[25]

鳥類

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ダーウィンフィンチにおいては、の発生時のBMP4発現の多様性が嘴のサイズや形状の差異に寄与しており、形態学的多様性をもたらすことで進化と関係していることが示されている[26]

シグナル伝達

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BMP4はTGF-βファミリーのメンバーであり、BMPR1(BMPR1A英語版またはBMPR1B英語版)とBMPR2英語版の2種類の異なる受容体型セリン/スレオニンキナーゼに結合する[27]。これらの受容体を介したシグナルはさらにSmadMAPK経路を介して伝達され、標的遺伝子の転写に影響を及ぼす。シグナル伝達が行われるためには、2種類の受容体の双方が機能的である必要がある。BMPはBMPR1が存在しない場合でもBMPR2に結合することができるが、その親和性は双方の受容体が存在する場合と比較して大きく低下する。BMPR1はBMPR2によってトランスリン酸化され、細胞内の下流のシグナル伝達を誘導して転写に影響を及ぼす[27]

Smadシグナル伝達経路

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TGF-βファミリーの受容体の大部分に共通することとして、Smad経路を介してシグナルが伝達される[27]。II型受容体はI型受容体の活性化を担い、I型受容体はR-SMAD英語版SMAD1英語版SMAD5英語版SMAD9英語版)のリン酸化を行う。リン酸化に伴って、R-SMADはco-SMAD(SMAD4)とともに複合体を形成して核へ移行する。このシグナル伝達経路はドルソモルフィン(dorsomorphin)と呼ばれる低分子によって阻害され、R-SMADの下流の影響が阻害される[27]

MAPKシグナル伝達経路

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MAPKを介したシグナル伝達カスケードは、MAPKKKMAPKKをリン酸化して活性化し、MAPKKがMAPKをリン酸化して活性化し、MAPKが細胞内応答を誘導する、という形で行われる[28]。MAPKKKの活性化は、主にGTPアーゼや他のグループのプロテインキナーゼとの相互作用を介して行われる。TGF-βは、ERKJNKp38の各MAPKシグナル伝達経路を誘導する[28]。BMP4もERK、JNK、p38を活性化することが知られており、この作用はSmadシグナル伝達経路とは独立したものであるが、大部分のケースではBMP4によって両者は共に活性化される[29]。ERK経路やJNK経路の活性化はSmadのリン酸化をもたらし、Smadの活性化を調節している。さらに、Smadと相互作用する転写因子はJNKやp38の基質を介して直接的影響を受けており、この2つのシグナル伝達経路が同じ標的に対して収束している可能性がある。この収束は主に両経路の協働的挙動によるものであるが、両者が互いに拮抗する作用を示す可能性を示唆する証拠も得られている。両シグナル伝達経路の直接的な活性化のバランスは、TGF-βの場合には誘導される細胞応答に大きな影響を及ぼすことが知られている[29]

BMP4による、ウサギ胚性幹細胞から胎盤幹細胞の作製[30]

阻害

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BMP4シグナルの阻害(コーディンノギン英語版フォリスタチン英語版による)は、外胚葉の神経板英語版への分化を引き起こす。これらの細胞がFGFからのシグナルも共に受けた場合には脊髄へ分化し、受けなかった場合には組織となる。

BMP4の過剰発現は腹側化をもたらすのに対し、ドミナントネガティブ変異体による阻害は胚の完全な背側化をもたらすか、もしくは2つの背腹軸が形成される可能性がある[31]

マウスでBMP4が完全に不活化された場合には、通常は原腸形成英語版時に致死となる。ヒトのBMP4の不活化の場合にも、同様の影響が生じると考えられている。完全な不活化をもたらすわけではないBMP4変異でも表現的影響が生じる場合があり、無歯症や骨粗鬆症への関与が示唆されている[32]

臨床的意義

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BMP4の発現上昇は、進行性骨化性線維異形成症など、さまざまな骨疾患と関連している[33]

口唇口蓋裂に関連する候補遺伝子の研究では、BMP4遺伝子の変異と発症との関連の可能性を示唆する証拠が得られている[34]

眼の発生

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眼は特に陸上脊椎動物にとって、餌や障害物の観察など、生存のために重要な器官である。眼の形成は、神経外胚葉英語版由来の眼胞と表皮外胚葉由来の水晶体の形成から開始される。BMPは水晶体形成を刺激することが知られている。眼の発生の初期段階では眼胞形成が必要不可欠であり、BMP4は眼胞内で強力に、そして周囲の間葉や表皮外胚葉では弱く発現している。このBMP4の濃度勾配が水晶体の誘導に重要であり、Bmp4のホモ接合型ヌル変異マウスでは水晶体の発生は起こらない。眼胞と接触している水晶体予定部位の外胚葉ではSox2がアップレギュレーションされ、水晶体の誘導に必要不可欠な役割を果たしている。Bmp4変異マウスの水晶体誘導の欠陥は眼胞内へBMP4を注入することでレスキューされるのに対し、BMP4を付着したビーズで眼胞自体を置き換えた場合には水晶体誘導は起こらない。水晶体誘導が起こるためにはBMP4によってさらに眼胞でMsx2英語版が活性化されることが必要であり、BMP4とMsx2の濃度勾配の組み合わせによって外胚葉でSox2が活性化される[35]

マウスでは、水晶体線維細胞へのノギンの注入によって細胞内のBMP4タンパク質は大きく減少する。このことは、ノギンがBMP4の産生の阻害に十分であることを示している。また、他のタンパク質Alk6英語版のドミナントネガティブ変異でもBMP4によるMsx2の活性化は遮断され、水晶体への分化が停止する[36]

脱毛症

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脱毛症は、毛包の形態や周期が異常な形へ変化することが原因となっている[37]。毛周期は、成長期(anagen)、退行期(catagen)、休止期(telogen)から構成される[38]。 哺乳類では、上皮と間葉の相互作用によって毛の発生は制御されている。毛幹の前駆細胞では、BMP4BMP2英語版といった遺伝子が活性化されている。具体的には、BMP4は毛乳頭内に存在し、毛の発生を制御するシグナル伝達ネットワークの一部となっている。BMP4は成長期における毛幹の分化を調節する生化学経路やシグナル伝達の誘導に必要であり、毛の分化を調節する転写因子の発現制御を行っているが、遺伝的ネットワーク内のどこでBMPが機能しているかに関しては未解明の部分も多い。BMP4シグナルは、ケラチンなど終末分化分子の発現を制御している可能性がある[39]

発生中の毛包では、ノギン、フォリスタチン、グレムリンといったBMP4と相互作用して阻害する因子が発現している[40]。BMP4を毛包の外毛根鞘に異所性発現するトランスジェニックマウスでは、毛球の毛母細胞の増殖が阻害される[41]。またノギンを欠失したマウスでは、正常なマウスと比較して毛包の数が減少し、毛包の発生が阻害される。ニワトリ胚では、ノギンの異所性発現によって毛包が拡大し、BMP4シグナルが近傍の細胞の毛盤(hair placode)への運命決定を抑制していることが示されている[8]。ノギンは出生後の皮膚において毛の成長を誘導していることがin vivoでの実験で示されている[42]

毛包形成や毛の成長を調節する経路は脱毛症の治療法の開発において重要であり、BMP4やそれが機能する経路は脱毛を防ぐための治療標的となる可能性がある[38]

出典

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  1. ^ a b c GRCm38: Ensembl release 89: ENSMUSG00000021835 - Ensembl, May 2017
  2. ^ Human PubMed Reference:
  3. ^ Mouse PubMed Reference:
  4. ^ van den Wijngaard A, Weghuis DO, Boersma CJ, van Zoelen EJ, Geurts van Kessel A, Olijve W (November 1995). “Fine mapping of the human bone morphogenetic protein-4 gene (BMP4) to chromosome 14q22-q23 by in situ hybridization”. Genomics 27 (3): 559–560. doi:10.1006/geno.1995.1096. hdl:2066/22049. PMID 7558046. https://repository.ubn.ru.nl//bitstream/handle/2066/22050/22050___.PDF. 
  5. ^ Oida S, Iimura T, Maruoka Y, Takeda K, Sasaki S (November 1995). “Cloning and sequence of bone morphogenetic protein 4 (BMP-4) from a human placental cDNA library”. DNA Sequence 5 (5): 273–275. doi:10.3109/10425179509030980. PMID 7579580. 
  6. ^ Knöchel S, Dillinger K, Köster M, Knöchel W (November 2001). “Structure and expression of Xenopus tropicalis BMP-2 and BMP-4 genes”. Mechanisms of Development 109 (1): 79–82. doi:10.1016/S0925-4773(01)00506-8. PMID 11677055. 
  7. ^ Aono A, Hazama M, Notoya K, Taketomi S, Yamasaki H, Tsukuda R, Sasaki S, Fujisawa Y (May 1995). “Potent ectopic bone-inducing activity of bone morphogenetic protein-4/7 heterodimer”. Biochemical and Biophysical Research Communications 210 (3): 670–677. Bibcode1995BBRC..210..670A. doi:10.1006/bbrc.1995.1712. PMID 7763240. 
  8. ^ a b Botchkarev VA, Botchkareva NV, Roth W, Nakamura M, Chen LH, Herzog W, Lindner G, McMahon JA, Peters C, Lauster R, McMahon AP, Paus R (July 1999). “Noggin is a mesenchymally derived stimulator of hair-follicle induction”. Nature Cell Biology 1 (3): 158–164. doi:10.1038/11078. PMID 10559902. 
  9. ^ Miyazaki Y, Oshima K, Fogo A, Hogan BL, Ichikawa I (April 2000). “Bone morphogenetic protein 4 regulates the budding site and elongation of the mouse ureter”. The Journal of Clinical Investigation 105 (7): 863–873. doi:10.1172/JCI8256. PMC 377476. PMID 10749566. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC377476/. 
  10. ^ Biniazan F, Manzari-Tavakoli A, Safaeinejad F, Moghimi A, Rajaei F, Niknejad H (February 2021). “The differentiation effect of bone morphogenetic protein (BMP) on human amniotic epithelial stem cells to express ectodermal lineage markers”. Cell and Tissue Research 383 (2): 751–763. doi:10.1007/s00441-020-03280-z. PMID 32960356. 
  11. ^ Hemmati-Brivanlou A, Thomsen GH (1995). “Ventral mesodermal patterning in Xenopus embryos: expression patterns and activities of BMP-2 and BMP-4”. Developmental Genetics 17 (1): 78–89. doi:10.1002/dvg.1020170109. PMID 7554498. 
  12. ^ Winnier G, Blessing M, Labosky PA, Hogan BL (September 1995). “Bone morphogenetic protein-4 is required for mesoderm formation and patterning in the mouse”. Genes & Development 9 (17): 2105–2116. doi:10.1101/gad.9.17.2105. PMID 7657163. 
  13. ^ Selleck MA, García-Castro MI, Artinger KB, Bronner-Fraser M (December 1998). “Effects of Shh and Noggin on neural crest formation demonstrate that BMP is required in the neural tube but not ectoderm”. Development (Cambridge, England) 125 (24): 4919–4930. doi:10.1242/dev.125.24.4919. PMID 9811576. オリジナルの20 May 2022時点におけるアーカイブ。. https://web.archive.org/web/20220520235003/https://authors.library.caltech.edu/16057/ 2021年8月22日閲覧。. 
  14. ^ Graham A, Francis-West P, Brickell P, Lumsden A (December 1994). “The signalling molecule BMP4 mediates apoptosis in the rhombencephalic neural crest”. Nature 372 (6507): 684–686. Bibcode1994Natur.372..684G. doi:10.1038/372684a0. PMID 7990961. 
  15. ^ Wolpert L, Tickle C, Arias AM, Lawrence P, Lumsden A, Robertson E, Meyerowitz E, Smith J (2015). “Vertebrate development III: Chick and mouse - completing the body plan”. Principles of development (Fifth ed.). Oxford, United Kingdom: Oxford University Press. p. 207. ISBN 978-0-19-870988-6 
  16. ^ Watanabe Y, Le Douarin NM (June 1996). “A role for BMP-4 in the development of subcutaneous cartilage”. Mechanisms of Development 57 (1): 69–78. doi:10.1016/0925-4773(96)00534-5. PMID 8817454. 
  17. ^ Arteaga-Solis E, Gayraud B, Lee SY, Shum L, Sakai L, Ramirez F (July 2001). “Regulation of limb patterning by extracellular microfibrils”. The Journal of Cell Biology 154 (2): 275–281. doi:10.1083/jcb.200105046. PMC 2150751. PMID 11470817. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC2150751/. 
  18. ^ Miyazaki Y, Oshima K, Fogo A, Ichikawa I (March 2003). “Evidence that bone morphogenetic protein 4 has multiple biological functions during kidney and urinary tract development”. Kidney International 63 (3): 835–844. doi:10.1046/j.1523-1755.2003.00834.x. PMID 12631064. 
  19. ^ Lee TJ, Jang J, Kang S, Jin M, Shin H, Kim DW, Kim BS (January 2013). “Enhancement of osteogenic and chondrogenic differentiation of human embryonic stem cells by mesodermal lineage induction with BMP-4 and FGF2 treatment”. Biochemical and Biophysical Research Communications 430 (2): 793–797. Bibcode2013BBRC..430..793L. doi:10.1016/j.bbrc.2012.11.067. PMID 23206696. 
  20. ^ Kurmann AA, Serra M, Hawkins F, Rankin SA, Mori M, Astapova I, Ullas S, Lin S, Bilodeau M, Rossant J, Jean JC, Ikonomou L, Deterding RR, Shannon JM, Zorn AM, Hollenberg AN, Kotton DN (November 2015). “Regeneration of Thyroid Function by Transplantation of Differentiated Pluripotent Stem Cells” (英語). Cell Stem Cell 17 (5): 527–542. doi:10.1016/j.stem.2015.09.004. PMC 4666682. PMID 26593959. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4666682/. 
  21. ^ Mira H, Andreu Z, Suh H, Lie DC, Jessberger S, Consiglio A, San Emeterio J, Hortigüela R, Marqués-Torrejón MA, Nakashima K, Colak D, Götz M, Fariñas I, Gage FH (Jul 2010). “Signaling through BMPR-IA regulates quiescence and long-term activity of neural stem cells in the adult hippocampus”. Cell Stem Cell 7 (1): 78–89. doi:10.1016/j.stem.2010.04.016. PMID 20621052. 
  22. ^ Colak D, Mori T, Brill MS, Pfeifer A, Falk S, Deng C, Monteiro R, Mummery C, Sommer L, Götz M (Jan 2008). “Adult neurogenesis requires Smad4-mediated bone morphogenic protein signaling in stem cells”. The Journal of Neuroscience 28 (2): 434–446. doi:10.1523/JNEUROSCI.4374-07.2008. PMC 6670509. PMID 18184786. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6670509/. 
  23. ^ Farioli-Vecchioli S, Ceccarelli M, Saraulli D, Micheli L, Cannas S, D'Alessandro F, Scardigli R, Leonardi L, Cinà I, Costanzi M, Mattera A, Cestari V, Tirone F (2014). “Tis21 is required for adult neurogenesis in the subventricular zone and for olfactory behavior regulating cyclins, BMP4, Hes1/5 and Ids”. Frontiers in Cellular Neuroscience 8: 98. doi:10.3389/fncel.2014.00098. PMC 3977348. PMID 24744701. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3977348/. 
  24. ^ Blázquez-Medela AM, Jumabay M, Boström KI (May 2019). “Beyond the bone: Bone morphogenetic protein signaling in adipose tissue”. Obesity Reviews 20 (5): 648–658. doi:10.1111/obr.12822. PMC 6447448. PMID 30609449. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6447448/. 
  25. ^ Nilsson EE, Skinner MK (October 2003). “Bone morphogenetic protein-4 acts as an ovarian follicle survival factor and promotes primordial follicle development”. Biology of Reproduction 69 (4): 1265–1272. doi:10.1095/biolreprod.103.018671. PMID 12801979. 
  26. ^ Abzhanov A, Protas M, Grant BR, Grant PR, Tabin CJ (September 2004). “Bmp4 and morphological variation of beaks in Darwin's finches”. Science (New York, N.Y.) 305 (5689): 1462–1465. Bibcode2004Sci...305.1462A. doi:10.1126/science.1098095. PMID 15353802. 
  27. ^ a b c d Miyazono K, Kamiya Y, Morikawa M (January 2010). “Bone morphogenetic protein receptors and signal transduction”. Journal of Biochemistry 147 (1): 35–51. doi:10.1093/jb/mvp148. PMID 19762341. 
  28. ^ a b Mitogen-Activated Protein Kinase Cascades”. Cell Signaling Technology, Inc.. 2012年11月17日閲覧。
  29. ^ a b Derynck R, Zhang YE (October 2003). “Smad-dependent and Smad-independent pathways in TGF-beta family signaling”. Nature 425 (6958): 577–584. Bibcode2003Natur.425..577D. doi:10.1038/nature02006. PMID 14534577. 
  30. ^ Tan, Tao; Tang, Xianghui; Zhang, Jing; Niu, Yuyu; Chen, Hongwei; Li, Bin; Wei, Qiang; Ji, Weizhi (2011-02-17). “Generation of trophoblast stem cells from rabbit embryonic stem cells with BMP4”. PloS One 6 (2): e17124. doi:10.1371/journal.pone.0017124. ISSN 1932-6203. PMC 3040765. PMID 21359200. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21359200. 
  31. ^ Metz A, Knöchel S, Büchler P, Köster M, Knöchel W (June 1998). “Structural and functional analysis of the BMP-4 promoter in early embryos of Xenopus laevis”. Mechanisms of Development 74 (1–2): 29–39. doi:10.1016/S0925-4773(98)00059-8. PMID 9651472. 
  32. ^ Yu M, Wang H, Fan Z, Xie C, Liu H, Liu Y, Han D, Wong SW, Feng H (July 2019). “BMP4 mutations in tooth agenesis and low bone mass”. Archives of Oral Biology 103: 40–46. doi:10.1016/j.archoralbio.2019.05.012. PMC 6639811. PMID 31128441. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6639811/. 
  33. ^ Kan L, Hu M, Gomes WA, Kessler JA (October 2004). “Transgenic Mice Overexpressing BMP4 Develop a Fibrodysplasia Ossificans Progressiva (FOP)-Like Phenotype”. The American Journal of Pathology 165 (4): 1107–1115. doi:10.1016/S0002-9440(10)63372-X. PMC 1618644. PMID 15466378. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC1618644/. 
  34. ^ Dixon MJ, Marazita ML, Beaty TH, Murray JC (March 2011). “Cleft lip and palate: understanding genetic and environmental influences”. Nature Reviews. Genetics 12 (3): 167–178. doi:10.1038/nrg2933. PMC 3086810. PMID 21331089. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3086810/. 
  35. ^ Furuta Y, Hogan BL (December 1998). “BMP4 is essential for lens induction in the mouse embryo”. Genes & Development 12 (23): 3764–3775. doi:10.1101/gad.12.23.3764. PMC 317259. PMID 9851982. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC317259/. 
  36. ^ Faber SC, Robinson ML, Makarenkova HP, Lang RA (August 2002). “Bmp signaling is required for development of primary lens fiber cells”. Development (Cambridge, England) 129 (15): 3727–3737. doi:10.1242/dev.129.15.3727. PMID 12117821. 
  37. ^ Cotsarelis G, Millar SE (July 2001). “Towards a molecular understanding of hair loss and its treatment”. Trends in Molecular Medicine 7 (7): 293–301. doi:10.1016/S1471-4914(01)02027-5. PMID 11425637. 
  38. ^ a b Millar SE (February 2002). “Molecular mechanisms regulating hair follicle development”. The Journal of Investigative Dermatology 118 (2): 216–225. doi:10.1046/j.0022-202x.2001.01670.x. PMID 11841536. 
  39. ^ Kulessa H, Turk G, Hogan BL (December 2000). “Inhibition of Bmp signaling affects growth and differentiation in the anagen hair follicle”. The EMBO Journal 19 (24): 6664–6674. doi:10.1093/emboj/19.24.6664. PMC 305899. PMID 11118201. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC305899/. 
  40. ^ Feijen A, Goumans MJ, van den Eijnden-van Raaij AJ (December 1994). “Expression of activin subunits, activin receptors and follistatin in postimplantation mouse embryos suggests specific developmental functions for different activins”. Development (Cambridge, England) 120 (12): 3621–3637. doi:10.1242/dev.120.12.3621. PMID 7821227. 
  41. ^ Huelsken J, Vogel R, Erdmann B, Cotsarelis G, Birchmeier W (May 2001). “beta-Catenin controls hair follicle morphogenesis and stem cell differentiation in the skin”. Cell 105 (4): 533–545. doi:10.1016/S0092-8674(01)00336-1. PMID 11371349. 
  42. ^ Botchkarev VA, Botchkareva NV, Nakamura M, Huber O, Funa K, Lauster R, Paus R, Gilchrest BA (October 2001). “Noggin is required for induction of the hair follicle growth phase in postnatal skin”. FASEB Journal 15 (12): 2205–2214. doi:10.1096/fj.01-0207com. PMID 11641247. 

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